Bonjour,
J'ai fait une production cytoplasmique dans E.coli dans un volume de culture de 50 ml. J'ai ensuite solubilisé mes corps d'inclusions par un volume de 5 ml (urée+Bmercaptoethanol+Tris HCL).
J'ai purifiée sur colonne nickel et récuperée 1 ml de proteine pur.
Je réalise ensuite des dialyses successives pour eliminer imidazol BmC et urée et ensuite j'essaye de renaturé par du glutathion oxydé/réduit.
Aprés une première dialyse je dose ma quantité de protéines et j'ai une concentration de 2,5mg/ml ensuite à la dernière dialyse j'ai une concentration de 0,6mg/ml. J'observais des agrégats que j'ai éliminé par centri.
Voila mes questions:
Pourquoi la proteine s'agrége? c'est seulement cela qui explique la différence de concentration, la technique de dialyse est-elle efficace? sinon pourrais-je utiliser une autre technique comme la filtration?
Et SVP dites moi pour une bonne prod on obtient qu'elle ordre de concentration ?
c'est bien 0,6mg/ml pour une culture de 50 ml???
Je suis débutante en prod de protéines merci de m'aider
-----