Bonjour!
Comment fait-on du TAP tag (tandem-affinity purification) à grande échelle?
Dans un article (Gavin et al. (2002) Nature 415:141-7), ils disent qu'ils ont branché l'étiquette TAP à l'extrémité C-terminale des ORF de gènes de levures.
Cela veut donc dire que l'on insère une étiquette TAP sous forme d'ADN directement dans le gène, qui va être transcrite et servir pour la purification après?
Merci, bonne journée!
OK! Désolé...
Je crois que je viens de comprendre
Oui c'est exactement cela.
Il existe une collection de levures ayant des genes taggés en Ct par le TAP-TAG. il est ensuite possible de purifier les proteines.
YOyo
Hello,
dans le même esprit il existe une collection de levures où "toutes" les orf sont fusionnées à la GFP...
Y'a un site web d'ailleurs, faut que je le retrouve
Merci pour cette confirmation!Envoyé par Yoyo
Dans mon cours en revanche, c'est écrit que le but du TAP-tag à grande échelle est "d'assigner des fonctions aux protéines et de voir leurs interactions"... En fait, je comprends parfaitement la technique du TAP tag (purification ou même élimination d'une protéine cible avec billes d'IgG et de calmoduline) mais en revanche, je vois mal comment identifier des protéines et leurs interactions avec cette technique
Merci et bonne journée!
oui! trouve!Hello,
dans le même esprit il existe une collection de levures où "toutes" les orf sont fusionnées à la GFP...
Y'a un site web d'ailleurs, faut que je le retrouve
Hello
TAP tag collection : http://www.openbiosystems.com/yeast-...on-library.php
GFP et GST fusions:
http://www.dbsr.duke.edu/yeast/Genom...s/exclones.htm
Deletion library:
http://www-sequence.stanford.edu/gro...eletions3.html
Site très utile:
http://www.yeastgenome.org/VL-yeast.html#buds
Bonsoir,
La technique du TAP-tag permet bien de purifier des complexes entiers! On utilise une protéine fusionnée au tag comme appat, et au bout de deux purifications (colonne d'IgG et colonne de calmoduline), on considère que les protéines co-purifiées interagissent de manière assez spécifique avec la protéine d'intérêt pour qu'elles forment réellement un complexe.En fait, je comprends parfaitement la technique du TAP tag (purification ou même élimination d'une protéine cible avec billes d'IgG et de calmoduline) mais en revanche, je vois mal comment identifier des protéines et leurs interactions avec cette technique
Comme confirmation, on utilise comme appat toutes les protéines du complexe supposé, successivement : normalement, on doit obtenir le même ensemble de protéines à chaque fois.
La technique est utile pour émettre des hypothèses sur la fonction d'une protéine inconnue : en trouvant dans un même complexe des protéines de fonction connue, on peut avoir une idée de la fonction de la protéine d'intérêt.
Par rapport à une co-immunoprécipitation, il y a deux purifications successives : c'est plus spécifique.
vero0oo
Tu oublies un détail essentiel, c'est la détection des protéines co-purifiées....
Ca se fait par Spectro de Masse, et c'est pas joué d'avance, loin s'en faut
Merci pour vos réponses complètes et claires.
Merci Nayeki pour ces adresses excellentes!
