Bonjour à tous,
Dans le cadre d'un travail je souhaite aborder et comparer l'efficacité de différents inhibiteurs de la PLpro (papain-like protein) du SARS-CoV 2. Il s'agit d'une protéase à cystéine qui a une activité mesurée généralement par analyse FRET en utilisant un tétrapeptide représentant sa séquence de clivage de référence (Lys-Arg-Gly-Gly) fusionné à un fluorophore. Ces données permettent ensuite de mettre le fluorophore en compétition avec l'inhibiteur choisi et cela permet de mesurer la fameuse IC50.
Après cette brève introduction, je vais donc vous présenter mon problème : ces IC50 sont toujours données en µM d'inhibiteur requis pour atteindre 50% d'inhibition. Le problème est donc que d'après moi (mais assez logiquement) la quantité nécessaire en µM pour atteindre une IC50 varie grandement selon la concentration initiale en PLpro.
Certains articles précisent la concentration en PLpro :Ma question est donc si la valeur d'IC50 est donnée uniquement sur base de la molarité en inhibiteur et pas de la molarité en inhibiteur/molarité en enzyme, comment puis-je comparer différents inhibiteurs ?
- 100 nM pour https://link.springer.com/article/10...1-00564-x#Sec2
- 100 nM aussi pour https://www.nature.com/articles/s41467-020-20718-8
- 300 nM pour https://www.nature.com/articles/s41467-021-21060-3#Sec7
- Aucune donnée dans le matériel et méthode pour https://www.nature.com/articles/s41598-021-83229-6#Sec8
N'hésitez pas à me dire si je n'ai pas été clair, merci d'avance,
Madlife
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