Bonjour,
je souhaite étudier l'état de phosphorylation de la protéine FAK, dans des cellules surexprimant une protéine d'intérêt par rapport a des cellules contrôles.
Pour cela je cultive les cellules en puits de FB6 et 3h après l'ensemencement j'effectue un lysat cellulaire directement avec du laemmli 1,5X (par grattage des puits)
Le problème est qu'en western blot j'ai beaucoup de variation d'actine alors que les cellules ont été ensemencées à la mm densité.
Pensez vous qu'il soit nécessaire de réaliser un dosage des protéines afin de déposer précisement la mm quantité de protéines?
Quels sont les meilleures conditions pour l'extraction et pour voir une différence de phosphorylation en western blot?
Est il est nécessaire de dépléter les cellules en serum, la veille de la manip?
merci d'avance pour vos conseils !!!
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