Bonjour à tous,
aujourd'hui je reprends le travail d'un postdoc sortant... et visiblement, on n'a pas les même méthodes .
Perso je suis un fervent des ligations/clonages cohésifs. Lui c'est plutôt blunt... Du coup je me pose quelques questions sur cette méthode dont j'ai de vieux souvenirs de cours mais 0 pratique...
Je dois réaliser un clonage assez classique. J'ai mon insert amplifié via la Phusion (et les amorces ne comportent pas d'ajouts d'enz de restriction en 5', c'est juste pile le gène d'intéret qui était dans un autre plasmide). J'ai mon vecteur de destination... il a un MCS, et j'ai repéré une enzyme qui coupe en "blunt" (hinc2). Donc je suppose que je peux linéariser mon plasmide avec cette enzyme ?
Autre point, comment se passe l'étape de ligation... ? C'est juste mon insert purifié + plasmid linéarisé + T4 ligase ?
Est-ce que je dois déphosphoriler mon plasmide ? Un traitement spéciale pour mon insert ? (a priori avec la Phusion, vu que c'est une proofreading, rien à faire de plus non?).
Merci d'avance pour vos conseils et suggestions !
-----