Bonjour,
Je suis actuellement en train d'essayer de cloner un gène muté de 5kb dans un vecteur. Pour celà, je dois préalablement réaliser des PCR à partir de l'ADN du patient. Ces PCR se font en deux étapes:
-une 1ere PCR
-une 2nde "nested", pour laquelle le PM attendu est sensiblement le même que pour la 1ere PCR et qui me permet simplement d'ajouter 4nt à mon gène pour le clonage (utilisation d'un kit)
Le problème que j'ai est que je ne parviens pas à obtenir de bande à découper sur mes gels (1% agarose dans TAE): mes dépots semblent rester dans les puits, quelque soit la condition considérée!!
J'ai regardé les différents troubleshooting autour de la PCR sur Internet mais ne parvient pas à identifier le problème: auriez vous une/des idée(s)?
Pour illustration, voici une photo représentative de ce que j'obtiens.
Piste 1: Controle négatif (PCR de l'eau)
Piste 2: ADN de mon patient (100ng)
Piste 3: Controle positif (50ng du plasmide contenant le gène wt). On y devine bien une bande au bon PM, mais celle-ci reste bien trop faible pour être purifiée (et le but est de purifier la bande pour l'ADN patient).
Merci par avance pour votre aide,
Abricote
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